血凝抑制實驗報告

時間：2022-01-26 19:33:36 報告我要投稿

血凝抑制實驗報告

　　在經濟發展迅速的今天，報告與我們的生活緊密相連，要注意報告在寫作時具有一定的格式。那么什么樣的報告才是有效的呢？以下是小編收集整理的血凝抑制實驗報告，歡迎閱讀與收藏。

血凝抑制實驗報告

血凝抑制實驗報告1

　　禽流感血凝和血凝抑制試驗可用于血清中抗體水平的監測，也可用于判斷未使用疫苗群體的感染狀態等。該試驗是目前世界衛生組織和國際動物健康組織進行全球流感監測所普遍采用的方法，而且因其具有經濟、快速、可靠、操作簡便、能夠處理大量的樣品，并能在短時間內報告禽流感抗體水平等優點，已經成為當前基層獸醫實驗室禽流感疫病監測和免疫抗體檢測中最為常用的方法。但因該試驗受人為操作影響較大，經常因操作不規范、不嚴謹等造成結果偏差大、重復性差等問題，現根據幾年來的工作經驗對該試驗過程中應注意的事項做一探討。

　　一、血凝試驗操作程序

　　1、取96孔90°V形酶標板，用微量移液器在第一至第五排的1~12孔每孔加25μLPBS液。

　　2、吸取25μL標準禽流感抗原加入到第一排第1孔中充分混勻。

　　3、從第1孔吸取25μL混勻后的抗原液加到第2孔中，混勻后吸取25μL加入到第3孔中，依次進行倍比稀釋至第二排最后一孔即第24孔，最后棄去25μL。第三排孔至第四排孔同上操作。

　　4、依次向第一至第五排孔的每孔中加入25μL1%的雞紅細胞懸液。

　　5、將酶標板置于微量振蕩器上振蕩10秒，室溫（20-25℃）靜置30min觀察結果（如果環境溫度太高，可置4℃環境下）。

　　6、結果判定：將板作45°傾斜，觀察紅細胞是否呈淚滴狀流淌。以完全凝集（不流淌）的抗原或病毒稀釋倍數為1個血凝單位（HAU）。

　　二、血凝抑制試驗操作程序

　　1、根據血凝試驗結果配制4HAU抗原。（即1HAU抗原除以4）

　　2、取96孔V形酶標板，用移液器在第1~12孔各加入25μLPBS。

　　3、在第1孔加入25μL被檢血清，充分混勻后移出25μL加至第2孔，依次類推，倍比稀釋至第12孔，棄去25μL。

　　4、按以上步驟加入陽性血清和陰性血清（各做兩份），作對照孔。

　　5、在第1~12孔各加入25μL4單位抗原，置于微量振蕩器上輕輕混勻，室溫20-25℃下靜置30min。

　　6、每孔加入25μL1%的雞紅細胞懸液。置于微量振蕩器上輕輕混勻，室溫（20-25℃）靜置40min后觀察結果，若環境溫度過高，可于4℃條件下進行，紅細胞將呈明顯的紐扣狀沉到孔底。

　　7、結果判定：只有陰性對照孔血清滴度不大于2log2，陽性對照孔誤差不超過1個滴度，試驗結果才有效。將酶標板作45°傾斜，以完全抑制紅細胞凝集的稀釋倍數判為該血清的血凝抑制滴度。當被檢血清效價大于等于4log2，判為禽流感抗體陽性。

　　三、試驗過程中的注意事項

　　1樣品的保存及試驗前處理

　　1.1采集的血液樣品應及時分離血清，分裝至離心管中，標記清楚，離心后吸出血清，對應編號冷藏送檢，并禁止運輸過程中劇烈震動。

　　1.2一般情況下，在5天內檢測的樣品可放置在4℃的冰箱中冷藏，否則低溫冷凍保存。

　　1.3在檢測前血清樣品應充分混勻，混勻時采用上下緩慢顛倒幾次的方法即可，切忌劇烈振蕩而引起產生氣泡及血清中蛋白變性。

　　1.4對出現膠凍狀的血清樣品，可采用反復攪動幾下再離心的方法有助于緩解該狀態。膠狀物是含纖維蛋白和纖維蛋白原的血清，可能是由于放置時間不夠造成的血清未完全析出狀態。不建議直接吸取其中少量的清亮血清。

　　1.5水禽等樣品為排除非特異性反應，還應相應進行滅能反應。具體操作方法：56℃水浴鍋30min或加等量10%雞紅細胞，輕搖后靜置30分鐘，離心，收集上清液即可。

　　2器材的選擇

　　2.1酶標板的選擇：建議使用96孔90°V型板進行試驗，通過反復試驗證明：90°V型板相對于110°板及130°板來講，具有紅細胞沉降速度快，產生的凝集圖像清晰、結果容易判定等優點。

　　2.2移液槍的選擇及使用：

　　①單道、多道可調微量移液槍應選擇合適的量程，以便精確度的提高。

　　②使用時應采用一檔吸液二檔排液的方法。吸取液體時，槍頭要深入液下緩慢平穩吸液。加緩沖液時應加在板孔底部。倍比稀釋血清時，應每孔至少反復吹吸6次，以便混合均勻，還應注意盡量避免產生泡沫引起混合不均。加抗原及紅細胞時應在板內液面上方加樣，以免交叉污染，影響試驗結果。

　　③加樣、倍比稀釋時應高度集中注意力，以免漏加、重復加樣等。

　　3試劑的保存及配置

　　3.1禽流感血凝抑制試驗所用的抗原、陽性血清應嚴格按照說明書的要求進行保存和配置，試驗前應提前將其恢復至室內溫。抗原的保存溫度為-20℃，反復凍融會降低抗原的滴度，應避免反復凍融。

　　3.2PH7.2、0.01mol/L的PBS液的制備。

　　①應盡量現用現配。

　　②每次使用前應測PH值，以免時間過長而導致PH值發生改變。

　　③由于PH試紙跨度范圍偏大，PH值不易準確介定，因此采用酸度計準確測量PH值，以提高試驗的精確度。

　　④全部試驗均采用同一種稀釋液。

　　3.31%紅細胞的制備。

　　①為避免有些雞只的紅細胞有自凝現象，因此配制1%紅細胞懸液時應選擇采取2-3只SPF雞或未進行過任何免疫過的成年公雞血液。當然采血的前提條件是要按十分之一采血量比例在一次性注射器中加入抗凝劑，如肝素、枸椽酸鈉、檸檬酸鈉等。

　　②采血完畢后分裝至2ml容量的圓底離心管中，因為通過2ml與1.5ml兩種容量離心管相比較，放入1.5ml尖底離心管中的話，離心后，離心管底部紅細胞不易與加入的PBS液混勻，易沉積在管底部，達不到洗脫干凈的目的。

　　③經20xx~3000r/min，5~10min，棄去上液和紅細胞上層的白細胞薄膜，再加入十倍以上血量的PBS液，上下緩慢顛倒（切忌用力過大使紅細胞破裂），使其充分混勻，再離心棄去上清液，反復幾次直至上清液清亮透明為止。

　　④在加紅細胞過程中還須不斷輕搖以確保紅細胞均勻，使其每孔加入相同數量的紅細胞。

　　⑤制備好的紅細胞液如果放置后上清液變紅，說明有溶血，不可再使用。

　　3.4抗原液的配制

　　①先做血凝試驗測定效價，以抗原與紅細胞完全凝集的孔為1HUA抗原，配制4HUA抗原應往前推算兩孔，即除以4后的值。

　　②每次做試驗前，必須重新檢測禽流感抗原的血凝效價，以免效價發生改變而導致抗原稀釋倍數不準確，從而導致試驗結果不準確。

　　③為保證配制的抗原準確，還要進行抗原回滴試驗。具體方法：做二排抗原回滴，在兩排的第1~8孔各加25微升PBS，取4HAU抗原25微升加在兩排的第1、第2孔，混勻，從第2孔倍比稀釋至第4孔，棄去25微升，另一排同樣。從第2至第8孔補25微升PBS，以保持75微升總量不變，另一排同樣。兩排的`第1至第8孔各加25微升1%紅細胞，震蕩10秒鐘。靜置30分鐘觀察結果。這樣在第1孔為4HAU抗原，第2孔為2HAU抗原，第3孔為1HAU抗原，第4孔為1/2HAU抗原，均為75微升總量，第5至第8孔為空白對照。如果抗原回滴試驗不成立，應相應調整抗原濃度直至回滴試驗成立。因為如果抗原濃度過高，則所測定的抗體效價水平偏低，如果抗原濃度過低，則所測定的效價偏高。所以不調整抗原濃度至實驗成立的話會對結果有很大影響。

　　4結果的判定

　　每次試驗必須設陽性及陰性（空白）對照血清，判別試驗是否成立。判讀結果時，將酶標板傾斜45°，以孔底沉淀的紅細胞流動性好，呈淚珠樣流淌，邊緣無凝集顆粒為凝集完全抑制。

　　5試驗器具的清洗

　　每次試驗完畢后，應將酶標板中液體甩凈，然后用自來水反復沖凈每個孔，再放入3%NaOH中4小時，清水反復沖凈，再放入3%Hcl中4小時，清水反復沖凈，再用蒸餾水反復沖洗幾次，甩干水份，入干燥箱中干燥備用。實驗用燒杯、加樣槽、量筒等也應充分洗凈、干燥。以免器具內有雜物、污物以及殘留物從而影響試驗結果。

　　四、小結

　　在進行禽流感血凝抑制試驗時，應充分考慮到各方面的影響因素，提供的檢測結果才會真實可靠，準確掌握禽類的免疫抗體水平，進而為科學防控禽流感提供理論依據。

血凝抑制實驗報告2

　　隨著養殖業的飛速發展和廣大養殖戶科學意識的不斷提高，人們普遍認識到實驗室檢測技術在臨床應用的重要性。下面簡單介紹一下雞新城疫微量血凝試驗和血凝抑制試驗的注意事項及操作方法。

　　應用：

　　用于新城疫、產蛋下降綜合征和傳梁性支氣管炎等的母源抗體的檢測、雛雞首免日齡的確定、疫苗免疫后的免疫應答的監測、臨床雞病的鑒別診斷等。

　　注意事項：

　　一、樣本要具有代表性：所采樣本要能代表整體，通常采用四角加中間的隨機取樣法，并且確定適當的樣品數量，一般1000只以下的雞群采樣率在2—5%；5000只以下1—2%；5000只以上0.5—1%。對產蛋期間的雞群可采雞蛋；對雛雞或青年雞，可采血。方法是：取青霉素小瓶，洗凈后用蒸餾水沖洗、控干水分，并注意不要用消毒劑，以免影響結果。每只雞采血量在1ml左右，不低于1ml，在室溫下靜置至血清自然析出。

　　二、四單位抗原的準確性：要獲得準確的監測效果，先做紅血球的凝集試驗，即測得抗原的血凝價，爾后前移2孔作為四單位抗原的稀釋度。

　　三、紅血球洗脫的充分性：原則上，新城疫檢測所用的紅血球應來源于非疫苗免疫過的健康公雞，但實際上卻多采用免疫過疫苗的健康公雞，有時甚至是病雞。因此，對紅血球的洗脫的次數要多、要充分，并注意轉速和時間，通常采用五次變速離心法：前四次為每分鐘1500轉，每次5分鐘，最后一次為每分鐘3000轉，持續7—8分鐘。另外，洗紅血球過程中，應注意動作要輕，玻璃儀器之間盡量減少碰撞，以免造成紅血球破裂而影響結果。

　　四、結果判定的及時性：檢測中，每次試驗均應設抗原與生理鹽水對照，加入紅血球后，每隔5分鐘觀察一次，一旦兩列對照孔圖像清晰地顯示出來時，應立即對樣本進行結果判定，過早過晚都會影響判定結果的準確性。

　　血凝與血凝抑制試驗的操作方法：

　　一、材料與儀器：新城疫抗原、1%雞紅血球、抗凝劑、生理鹽水、被檢血清、離心機、吸管、滴管、洗耳球、燒杯、量筒、注射器、長針頭、96孔V型醫用血凝板、微量移液器、微量振蕩器、恒溫培養箱、冰箱等。

　　二、方法：

　　1%雞紅血球的制備：

　　1.用長針刺入雞心臟或翅下靜脈，采血，采血量視用量而定，5%抗凝劑與全血的比例為1∶3—4。

　　2.洗血球：共洗4—5次，每次5—8分鐘，紅血球與生理鹽水的比例至少為1∶2—3。離心機轉速為每分鐘1500—3000轉，最后傾去上清。

　　3.吸紅血球泥1ml加生理鹽水99ml，配成1%紅血球備用。

　　三、血凝試驗：

　　1.血凝板上12個孔內全部加入生理鹽水，每孔0.05ml，吸等量新城疫抗原于第一孔內，混勻后吸出同量于第二孔內混勻，以此類推稀釋至第11孔，并棄去0.05ml，留第12孔作為生理鹽水對照，然后全部孔內加入1%雞紅血球。

　　2.將血凝板置于振蕩器上振蕩1—2分鐘，使材料充分混均，放入恒溫培養箱，每5分鐘觀察一次，至10—15分鐘取出，一般以生理鹽水對照孔的圖象清析地出現為準。

　　3.結果判定：紅血球在反應板底部全部均勻鋪開為完全凝集（++++），在血凝板底部集為一小紅點為沉淀（－），如底部為一小紅點，四周為凝集的紅細胞，則為不完全凝集（++）。

　　4.出現完全凝集的抗原的稀釋度，即為該抗原的凝集價。

　　5.四單位抗原的制備：血凝試驗的結果如為28（256），則前移2孔即26（64），作為四單位抗原的稀釋度。即：63ml生理鹽水+1ml抗原即為四單位抗原。

　　四、血凝抑制試驗：

　　1.血凝板上1—11孔全部加入0.05ml的生理鹽水，于第一孔內加入等量的被檢抗體，稀釋至第10孔，棄去0.05ml，再加入等量的4單位新城疫抗原至第11孔，第11孔為抗原對照，12孔為生理鹽水對照。在振蕩器上振蕩1—2分鐘，放置室溫約20分鐘，然后加入等量的1%雞紅血球，振蕩后放入恒溫培養箱大約10—15分鐘后進行結果判定。

　　2.結果：能完全抑制紅細胞凝集的被檢抗體的稀釋度為該被檢抗體的血凝抑制滴度。

　　注：1、HI價在23—24時免疫可產生良好的免疫應答，如在疫區可提高到24—25免疫。

　　2、24—25

　　注：#為完全抑制，++為不完全抑制，－為不抑制。

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